Elabscience®自主研發(fā)的 Caspase 1 Activity Assay Kit 采用分光光度法，可用于檢測細胞、組織裂解液或其它樣本的caspase 1 活性。那么你知道Elabscience Caspase 1活性檢測試劑盒該怎么用嗎？讓我們一起來看看吧！

一、準備工作

1. Cell Lysis Buffer 溶解后混勻，冰浴備用。

2. 2×Reaction Buffer 溶解后混勻，冰浴備用。

3. Ac-YVAD-pNA 和 pNA 溶解后混勻，冰浴備用。

二、樣本準備

1. 細胞樣本

按照常規(guī)方法收集細胞沉淀，PBS 重懸細胞并計數，600×g離心 5 min，棄上清，按照每 100 萬細胞加入 100 μL Cell Lysis Buffer 的比例加入預冷的 Cell Lysis Buffer 重懸細胞，在冰浴條件下裂解 30 min，裂解期間需渦旋震蕩 3~4 次，每次 10 s。裂解后的樣本，于 4°C，11000 ×g 離心 10~15 min，小心地吸取上清至新的 EP 管中，并置于冰上待用。同時使用 Bradford 法（E-BC-K168-M）測定蛋白濃度。

2. 組織樣本

取50 mg待測組織樣本，用PBS或者生理鹽水清洗1-2次，去除組織中殘留的血細胞，用手術剪剪碎，加入200μL 預冷的Cell Lysis Buffer，進行勻漿（在冰浴條件下進行，若組織質量加倍時，加入的預冷Cell Lysis Buffer 也需加倍）。將勻漿好的樣本轉移至1.5 mL離心管中，冰浴裂解30min。裂解后的樣本，于 4°C，11000×g離心10~15min，小心地吸取上清至新的EP管中，并置于冰上待用。同時使用 Bradford法（E-BC-K168-M）測定蛋白濃度。

三、實驗步驟

1. 制備 pNA 標準曲線（選做）

1) 配制標準品稀釋液：取冰浴的 Cell Lysis Buffer 和2×Reaction Buffer，按照 1:1 配制標準品稀釋液，渦旋或吹打混勻。

2) 進行倍比稀釋：取6支EP管，第一支EP管中加入294 μL標準品稀釋液，其他每管中加入150 μL標準品稀釋液，從pNA (10 mM)的標準品中吸取6 μL到第一支 EP管中混勻配成 200 µM 的標準品工作液，吸取150 μL 到第2支EP管，混勻后吸取150 μL到第3支EP管，按此步驟往后依次吸取混勻至第5支EP管，如下圖所示：

3) 每管取100 µL不同濃度的標準品置于酶標板或比色皿中，檢測405 nm下 OD值。（為保證實驗結果的準確性，建議所有的待測樣本和標準品都設立復孔。）

4) 繪制標準曲線：分別以標準品濃度和對應絕對OD值（每一個標準品的 OD405減去不含pNA的OD405）作為x軸和y軸，使用圖形軟件繪制標準曲線，如下圖所示。實測數據可能因實驗條件、檢測儀器等的不同而存在差異，圖中數據僅供參考。

2. Caspase 1 的活性檢測

1) 取 50 μL 樣本裂解液，按照下表設置反應體系。

2) 加入 Ac-YVAD-pNA 后混勻，37°C 孵育 1~2 h，發(fā)現顏色變化較明顯時即可檢測 OD405。若顏色變化不明顯，可適當延長孵育時間到 4 h。

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